ارزیابی اثر ضد باکتریال محلول هیپوکلریت سدیم، کلرهگزیدین، عصاره بره موم و گیاه زوفا بر روی باکتری E.Fecalis
نوع مقاله : مقالههای پژوهشی
نویسندگان
1
گروه دندانپزشکی، دانشکدهی دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران
2
گروه طب ایرانی، دانشکدهی پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان، اصفهان، ایران
چکیده
مقدمه: در درمان ریشهی ایدهآل جهت پاکسازی نواحی غیر قابل دسترس در داخل کانال نیازمند شستشودهندهی مناسب میباشیم. شستشو دهندههای شایع کانال محلول هیپوکلریت سدیم و کلرهگزیدین 2 درصد میباشند. این مواد شیمیایی دارای سمیت سلولی و بو و طعم نامناسباند. استفاده از مواد طبیعی مانند گیاه زوفا و بره موم میتواند به عنوان جایگزین این مواد بدون داشتن عوارض جانبی باشد. هدف از این مطالعهی آزمایشگاهی، ارزیابی اثر ضد باکتریال محلول هیپوکلریت سدیم، محلول کلرهگزیدین، عصارهی بره موم و گیاه زوفا بر روی باکتری E.fecalis بود.
مواد و روشها: در این مطالعهی تجربی- آزمایشگاهی از تعداد 120 نمونه دندان پره مولر مندیبل برای ارزیابی اثر ضدباکتریایی 4 محلول شستشودهنده شامل هیپوکلریت سدیم، کلرهگزیدین، عصاره بره موم و گیاه زوفا بر روی باکتری E.fecalis استفاده گردید. پس از آمادهسازی نمونهها 6 گروه 20تایی شامل مواد مورد ارزیابی و برای گروه کنترل از آب استریل استفاده شد. در همهی نمونهها کشت باکتری E.fecalis صورت گرفت و پس از شست و شو با هر یک از گروههای مورد مطالعه، نتایج به روش CFU مورد ارزیابی قرار گرفت.
یافتهها: نتایج مطالعه با استفاده از آزمون Kruskal Wallis و Mann-Whitny مورد تحلیل آماری قرار گرفت. این آزمون نشان داد که بین 5 گروه مورد پژوهش تفاوت معنیدار وجود دارد (0/001 > P).
نتیجهگیری: در این مطالعه به ترتیب از بیشترین به کمترین اثر ضدباکتریایی شامل هیپوکلریت، زوفا، کلرهگزیدین، بره موم و آب استریل بودند.
مواد و روشها: در این مطالعهی تجربی- آزمایشگاهی از تعداد 120 نمونه دندان پره مولر مندیبل برای ارزیابی اثر ضدباکتریایی 4 محلول شستشودهنده شامل هیپوکلریت سدیم، کلرهگزیدین، عصاره بره موم و گیاه زوفا بر روی باکتری E.fecalis استفاده گردید. پس از آمادهسازی نمونهها 6 گروه 20تایی شامل مواد مورد ارزیابی و برای گروه کنترل از آب استریل استفاده شد. در همهی نمونهها کشت باکتری E.fecalis صورت گرفت و پس از شست و شو با هر یک از گروههای مورد مطالعه، نتایج به روش CFU مورد ارزیابی قرار گرفت.
یافتهها: نتایج مطالعه با استفاده از آزمون Kruskal Wallis و Mann-Whitny مورد تحلیل آماری قرار گرفت. این آزمون نشان داد که بین 5 گروه مورد پژوهش تفاوت معنیدار وجود دارد (0/001 > P).
نتیجهگیری: در این مطالعه به ترتیب از بیشترین به کمترین اثر ضدباکتریایی شامل هیپوکلریت، زوفا، کلرهگزیدین، بره موم و آب استریل بودند.
کلیدواژهها
عنوان مقاله English
Evaluation of the Antibacterial Effect of Sodium Hypochlorite, Chlorhexidine, Propolis Extract and Hyssopus Officinalis Plant on E.Fecalis Bacteria
نویسندگان English
Fatemeh Karami
1
Hamid Razavian
1
Mohammad Mazaheri
2
1
Department of Dentistry, Faculty of Dentistry, Isfahan University of Medical Sciences, Isfahan, Iran
2
Department of Iranian Medicine, Faculty of Medicine, Isfahan University of Medical Sciences, Isfahan, Iran
چکیده English
Introduction: In the ideal root canal treatment, we need a suitable irrigator to clean the inaccessible areas inside the canal. Common channel cleaners are sodium hypochlorite solution and 2% chlorhexidine. These chemicals have cytotoxicity and unpleasant smell and taste. The use of natural substances such as hyssop and propolis can be considered as an alternative to these substances without side effects. The purpose of this invitro study was to evaluate the antibacterial effect of sodium hypochlorite solution, chlorhexidine solution, propolis extract and hyssopus officinalis plant on E.fecalis bacteria
Materials and Methods: In this experimental laboratory study, 120 mandibular premolar tooth samples were used to evaluate the antibacterial effect of 4 substances: sodium hypochlorite solution, chlorhexidine solution, propolis extract and hyssop plant on E.fecalis bacteria. After preparing the samples, there were 6 groups of 20 including the evaluated materials and the fifth group of sterile water as the control group. In all the samples, E.faecalis bacteria were cultured and after washing with each of the studied groups, the results were evaluated by CFU method.
Result: The results of the study were statistically analyzed using the Kruskal Wallis test and the mann whitny post hoc test. This test showed that there is a significant difference between the 5 research groups. (p.v < 0.001)
Conclusion: In this study, hypochlorite, hyssop, chlorhexidine, propolis and sterile water respectively had the most antibacterial effect.
کلیدواژهها English
Canal Irrigator
Propolis
Hyssopus Officinalis
Sodium Hypochlorite
Chlorhexidine
1. Zehnder M. Root canal irrigants. J Endod 2006; 32(5): 389-98.
2. Hülsmann M, Hahn W. Complications during root canal irrigation–literature review and case reports. Int Endod J 2000; 33(3): 186-93.
3. Babaji P, Jagtap K, Lau H, Bansal N, Thajuraj S, Sondhi P. Comparative evaluation of antimicrobial effect of herbal root canal irrigants (Morinda citrifolia, Azadirachta indica, Aloe vera) with sodium hypochlorite: An in vitro study. J Int Soc Prev Community Dent 2016; 6(3): 196-9.
4. Valera MC, Da Rosa JA, Maekawa LE, De Oliveira LD, Carvalho CA, Koga-Ito CY, et al. Action of propolis and medications against Escherichia coli and endotoxin in root canals. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2010; 110(4): e70-4.
5. Parolia A, Kumar H, Ramamurthy S, Madheswaran T, Davamani F, Pichika MR, et al. Effect of propolis nanoparticles against Enterococcus faecalis biofilm in the root canal. Molecules 2021; 26(3): 715.
6. Razavian SH, Khazaei S, Kazemi S, Sayedi SM. Propolis and its effect on oral health [in Persian]. J Isfahan Med Sch 2012; 8(5): 491-501.
7. Bankova VS, de Castro SL, Marcucci MC. Propolis: recent advances in chemistry and plant origin. Apidologie 2000; 31(1): 3-15.
8. Abbasi AJ, Mohammadi F, Bayat M, Gema SM, Ghadirian H, Seifi H, et al. Applications of propolis in dentistry: a review. Ethiop J Health Sci 2018; 28(4): 505-12.
9. Hausen BM, Wollenweber E, Senff H, Post BJ. Propolis allergy: (I). Origin, properties, usage and literature review. Contact Dermatitis 1987; 17(3): 163-70.
10. Chen CN, Weng MS, Wu CL, Lin JK. Comparison of radical scavenging activity, cytotoxic effects and apoptosis induction in human melanoma cells by Taiwanese propolis from different sources. Evid Based Complement Alternat Med 2004; 1(2): 175-85.
11. Koc AN, Silici S, Mutlu-Sariguzel F, Sagdic O. Antifungal activity of propolis in four different fruit juices. Food Technology and Biotechnology 2007; 45(1): 57-61.
12. Oolic N. A review of propolis antitumour action in vivo and in vitro. Java Authentication and Authorization Service. 2010; 2(1): 1-20.
13. Saavedra N, Barrientos L, Herrera CL, Alvear M, Montenegro G, Salazar LA. Effect of chilean propolis on cariogenic bacteria Lactobacillus fermentum. Ciencia e Investigación Agraria 2011; 38(1): 117-25.
14. Fathiazad F, Mazandarani M, Hamedeyazdan S. Phytochemical analysis and antioxidant activity of Hyssopus officinalis L. from Iran. Adv Pharm Bull 2011; 1(2): 63-7.
15. Zawislak G. Essential oil composition of Hyssopus officinalis L. grown in Poland. Journal of Essential Oil Bearing Plants 2016; 19(3): 699-705.
16. Benelli G, Pavela R, Canale A, Cianfaglione K, Ciaschetti G, Conti F, et al. Acute larvicidal toxicity of five essential oils (Pinus nigra, Hyssopus officinalis, Satureja montana, Aloysia citrodora and Pelargonium graveolens) against the filariasis vector Culex quinquefasciatus: Synergistic and antagonistic effects. Parasitol Int 2017; 66(2): 166-71.
17. Sadr S, Kaveh N, Agin K, Choopani R, Kaveh S, Tahermohammadi H. Herbal Treatments for Asthma, according to Avicenna. J Complement Integr Med 2022; 10(1): 15205-26.
18. Fathiazad F, Mazandarani M, Hamedeyazdan S. Phytochemical analysis and antioxidant activity of Hyssopus officinalis L. from Iran. Adv Pharm Bull 2011; 1(2): 63-7.
19. Tahir M, Khushtar M, Fahad M, Rahman MA. Phytochemistry and pharmacological profile of traditionally used medicinal plant Hyssop (Hyssopus officinalis L.). Journal of Applied Pharmaceutical Science 2018; 8(7): 132-40.
20. Vlase L, Benedec D, Hanganu D, Damian G, Csillag I, Sevastre B, et al. Evaluation of antioxidant and antimicrobial activities and phenolic profile for Hyssopus officinalis, Ocimum basilicum and Teucrium chamaedrys. Molecules 2014; 19(5): 5490-507.
21. Paun G, Litescu SC, Neagu E, Tache A, Lucian Radu G. Evaluation of Geranium spp., Helleborus spp. and Hyssopus spp. polyphenolic extracts inhibitory activity against urease and α-chymotrypsin. J Enzyme Inhib Med Chem 2014; 29(1): 28-34.
22. Ma X, Ma X, Ma Z, Wang J, Sun Z, Yu W, Li F, Ding J. Effect of Hyssopus officinalis L. on inhibiting airway inflammation and immune regulation in a chronic asthmatic mouse model. Exp Ther Med 2014; 8(5): 1371-4.
23. Fraternale D, Ricci D, Epifano F, Curini M. Composition and antifungal activity of two essential oils of hyssop (Hyssopus officinalis L.). Journal of Essential Oil Research 2004; 16(6): 617-22.
24. Höld KM, Sirisoma NS, Sparks SE, Casida JE. Metabolism and mode of action of cis-and trans-3-pinanones (the active ingredients of hyssop oil). Xenobiotica 2002; 32(4): 251-65.
25. Mazzanti G, Battinelli L, Salvatore G. Antimicrobial properties of the linalol‐rich essential oil of Hyssopus officinalis L. var decumbens (Lamiaceae). Flavour and Fragrance Journal 1998; 13(5): 289-94.
26. Gollapudi S, Sharma HA, Aggarwal S, Byers LD, Ensley HE, Gupta S. Isolation of a previously unidentified polysaccharide (MAR-10) from Hyssop officinalis that exhibits strong activity against human immunodeficiency virus type 1. Biochem Biophys Res Commu 1995; 210(1): 145-51.
27. Haapasalo M, Shen Y, Wang Z, Gao Y. Irrigation in endodontics. Br Dent J 2014; 216(6): 299-303.
28. Bazvand L, Aminozarbian MG, Farhad A, Noormohammadi H, Hasheminia SM, Mobasherizadeh S. Antibacterial effect of triantibiotic mixture, chlorhexidine gel, and two natural materials Propolis and Aloe vera against Enterococcus faecalis: An ex vivo study. Dent Res J (Isfahan) 2014; 11(4): 469-74.
29. Salehi A, Setorki M. Analgesic and anti-inflammatory effects of ethanolic extract of hyssopus officinalis in mice [in Persian]. J Gorgan Univ Med Sci 2018; 20(2): 42-7.
30. Bhavani GD, Rathod T, Parveen N, Tirupathi P, Dharavattu P, Sekhar VS, et al. Assessment of the Antimicrobial Effectiveness of Herbal Root Canal Irrigants (Propolis, Triphala, and Aloe Vera) and Chlorhexidine Against Enterococcus Faecalis. Cureus. 2023; 15(7): e41628.
31. Adiningrat A, Maulana I, Fadhlurrahman AG, Kurniawan MF, Aji NR. Evaluation of bio-compatibility and effectiveness of propolis Tetragonula sp. as dental anti-microbial agent. J Stoma 2023; 76(2):94-100.
32. Fallahian F, Mahdavi N, Haeri MR. The cytotoxic effect of hyssop extract on breast cancer cell line [in Persian]. Qom Univ Med Sci J 2019; 22-8.
33. Nouri M. Preparation of nanoliposomes containing Hyssopus officinalis L. and Eryngium caeruleum M. Bieb extracts and investigate their antimicrobial and antimicrobial effects [in Persian]. J Med Plants 2020; 19(75): 118-13.
34. Hassanshahiyan M, Saadatfar A, Masoumi F. Antimicrobial properties of Hyssopus officinalis extract against antibiotic-resistant bacteria in planktonic and biofilm form. Biological Journal of Microorganism. 2018; 7(28): 91-101.
35. Shamaei S, Sezari Hamankoh R. Evaluation of antimicrobial effects and estimation of anti-cancer potential of green nanoparticles biosynthesized using hyssop extract on different cell lines (A549, MCF-7 and Hela) [in Persian]. Iranian J Plant Biotechnol 2022; 17(1): 51-63.
36. Sayyahi J, Mobayen H, Jafari B, Jafari Sales A. Antibacterial Effects of Ethanolic Extracts of Ziziphus jujuba, Medicago sativa, Reum ribes and Hyssopus officinalis on Some Standard Gram-Positive and GramNegative Bacteria in Vitro) [in Persian]. Armaghan Danesh 2021; 26(3): 338-50.
37. Alizade Behbahani B, Noshad M. Evaluation of the minimum inhibitory concentration and minimum bactericidal concentration of Hyssopus officinalis extract on a number of Gram-positive and Gram-negative bacteria: A study in vitroiranian [in Persian]. Journal of Food Science and Technology 2021; 18(1): 1-9.
38. Nashveh M, Nazari S, Zafari D. Antibacterial activity of balsam and propolis from Populus deltoids [in Persian]. Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology). 2018; 427-35.
39. Norouzi R, Adnani Sadati SJ, Yaghoubian R, Fateh R, Siadatpanah A. Antitrichomonal Effect of Methanolic Extract of Hyssopus Officinalis on Trichomonas vaginalis in Vitro [in Persian]. Qom Univ Med Sci J 2021; 14(12): 14-21.
40. Ghavidel F, Jafarizadeh-Malmiri H, Javadi A, Anarjan N. Investigation of the physico-chemical and antimicrobial properties of propolis extract as a natural food preservative [in Persian]. Scientific - Research Journal Food Hygiene 2021; 11(3): 95-110.
41. Gomes BP, Ferraz CC, ME V, Berber VB, Teixeira FB, Souza‐Filho FJ. In vitro antimicrobial activity of several concentrations of sodium hypochlorite and chlorhexidine gluconate in the elimination of Enterococcus faecalis. Int Endod J 2001; 34(6): 424-8.
42. Lotfi M, Vosoughhosseini S, Ranjkesh B, Khani S, Saghiri M, Zand V. Antimicrobial efficacy of nanosilver, sodium hypochlorite and chlorhexidine gluconate against Enterococcus faecalis. Afr J Biotechnol 2011; 10(35): 6799-803.
